CRYO-METHODES

Cryo methodes

Techniques de préparation d’échantillons pour la microscopie électronique

Cliquez ici pour prendre contact afin de réserver une ressource

 

 

Telephone : 05 62 88 90 35  / 05 61 33 59 12
Cette page rassemble l’ensemble des ressources qui utilisent les techniques de préparation d’échantillons à basse température pour une meilleure conservation morphologique. Les échantillons ainsi préparés pourront être observés en cryo-microscopie en transmission (MET) ou à balayage (MEB).

 

Cryosection de cellules tumorales fixées chimiquement (technique Tokuyasu) Observation à 80KV

Cryosection de cellules tumorales fixées chimiquement (technique Tokuyasu) – Observation à 80KV

Services :

  • Congélation ultra rapide par immersion dans l’éthane liquide ou par haute pression d’échantillons entiers (bactéries, virus, particules, liposomes, …) dans de la glace vitreuse jusqu’à 200µm d’épaisseur
  • Cryo-sections (techniques CEMOVIS et Tokuyasu)
  • Cryo-substitution et enrobage en résine automatisés à très basse température
  • Cryo-fracture et sublimation
  • Cryo-microscopie en transmission et à balayage

Mode d’accès :

  • Assistance
  • Prestation de service

 

Ressources en préparation d’échantillons pour microscopie électronique

 

Nom
Caractéristiques techniques
Lieu
Cryo-ultramicrotome
Leica UC7/FC7
Chambre cryo amovible, cryosphère (évite la contamination par du givre), système antistatique & micromanipulateur METi – Campus UPS
Cryosubstituteur
AFS-2/FSP
Automatisation complète des process, associé à un automate de gestion des réactifs METi – Campus UPS
Cryofixateur haute pression
Leica EM ICE
Congélation de -8000 à -12000°/s sous une pression de 2000 bars METi – Campus UPS
Cryoplunge
Leica EMGP
Automate de congélation ultra-rapide dans l’éthane, équipé stéréo-microscope METi – Campus UPS
Module de cryopréparation
PP3000T Quorum
Chambre de cryo tranfert MEB FEG Quanta 250 FEI
pour métallisation, cryo-fracture et sublimation
CMEAB, Faculté de Médecine Rangueil

Cliquez ici pour prendre contact afin de réserver une ressourceQuelques publications réalisées avec le concours de ces ressources :

  • Bidimensional lamellar assembly by coordination of peptidic homopolymers to platinum nanoparticles. Nat Commun., 11(1):2051. Manai G., Houimel H., Rigoulet M., Gillet A., Fazzini PF., Ibarra A., Balor S., Roblin P., Esvan J., Coppel Y., Chaudret B., Bonduelle C., Tricard S. (2020)
  • Good Vibrations: Structural Remodeling of Maturing Yeast Pre-40S Ribosomal Particles Followed by Cryo-Electron Microscopy. Molecules. 25(5):1125. Shayan R., Rinaldi D., Larburu N., Plassart L., Balor S., Bouyssié D., Lebaron S., Marcoux J., Gleizes PE., Plisson-Chastang C. (2020)
  • Post-mitotic dynamics of pre-nucleolar bodies is driven by pre-rRNA processing. J. Cell Science Octobre 2012. Carron C, Balor S, Delavoie F, Plisson-Chastang C, Faubladier M, Gleizes PE, O’Donohue MF
  • Cord factor (trehalose 6,6′-dimycolate) forms fully stable and non-permeable lipid bilayers required for a functional outer membrane. Biochim Biophys Acta. Sep. 2013. Rath P, Saurel O, Czaplicki G, Tropis M, Daffé M, Ghazi A, Demange P, Milon A.
  • Artificial feeding of Varroa destructor through a chitosan membrane: a tool for studying the host-microparasite relationship. Tabart J1, Colin ME, Carayon JL, Tene N, Payre B, Vetillard A. Exp Appl Acarol, 2013,61(1), 107-18.

Les commentaires sont fermés