FRAP / PHOTOABLATION / OPTOGENETIQUE

	Polyvalence pour manipuler les composantes du vivant
	05 61 55 75 93

Système axé sur la manipulation du vivant, cette station extrêmement polyvalente permet notamment de quantifier des échanges entre compartiments cellulaires ou de mesurer la vitesse de diffusion de protéines selon différentes conditions expérimentales (techniques « FRAP »). L’optogénétique ou photo-activation est quant à elle une technique récente, initialement employée en neurologie et dont les champs d’applications s’élargissent progressivement. Elle est utilisée sur la plateforme de TRI pour notamment activer, inactiver la transcription d’ADN ou la production de protéines. Finalement, la photo-ablation permet d’utiliser la lumière comme un couteau afin d’observer le devenir ou remodelage de molécules d’ADN, les membranes cellulaires ou de cytosquelettes.

 

Services :

Étude de la diffusion (FRAP) multipoints et multi-zones Optogénétique en multipoints et multi-zones Nanodissection de cytosquelettes cellulaires, de membranes apicales de cellule… Dommage à l’ADN acquisition et suivi en fluorescence Analyse d’image couplée à ces techniques Post-traitement (déconvolution, recalage, suivi, analyse de diffusion…)   Mode d’accès : Assistance Projet collaboratif Prestation de service

Cassure d’une fibre d’actine par photo-ablation

Ressources disponibles

 

Nom	Caractéristiques techniques	Lieu
FRAP/ photoblation/ optogénétique	Monté sur microscope champ large inversé couplé à un système de balayage laser multipoints Laser de FRAP à 473nm Photoablation en 0,4ns a une fréquence de 7kHz	LBCMCP – Campus UPS
FRAP/ Spinning Disk	Monté sur spinning disk inversé, Laser de FRAP à 375nm	Infinity – Purpan
FRAP/ photoablation	Monté sur microscope champ large inversé, micropoint laser illumination et ablation, de 365nm à 656nm	IBCG – Campus UPS

Quelques publications réalisées avec le concours de cette ressource :

• Gemal-Cedrick Taty-Taty and all, Cell Cycle 13:3, 1-9; frebruary, 2014
• G.gay, Courtheoux, T.,Reyes.C,Tournier.S and Gachet.Y. (2012). J Cell Biol 196 (6):757
• Courtheoux, T., Gay, G. Gachet, Y., and Tournier, S. (2009). J Cell Biol 187, 399-412