CALENDRIER

Mai
22
mar
Démonstration dispositif Inscoper
Mai 22 – Mai 25 Jour entier
Démonstration dispositif Inscoper @ FRAIB | Castanet-Tolosan | Occitanie | France
La société Inscoper présentera leur boitier d’intégration et de gestion des périphériques. Ce dernier permet de mieux les gérer et ainsi accélérer les acquisitions. Pour cette démonstration, le dispositif est installé sur le microscope Spinning disk de la FRAIB entre le 22 et le 25 mai.

Juin
6
mer
17ème journée de formation du RCCM
Juin 6 – Juin 8 Jour entier
Cette nouvelle édition du colloque dédié aux techniques et à la pratique de la microscopie électronique sera cette année placé sous la thématique “Ultrastructure tissulaire et cellulaire”. Les inscriptions sont ouvertes du 5 mars au 8 juin prochain. Le colloque se prêtera également à un concours photo et poster.

 

 


Programme prévisionnel

Mercredi 6 juin
  • 12.00 – 14.00 : Accueil des participants – Salle Madesclaire dans le hall de la Faculté de Médecine
  • 14.00 – 14.15 : Présentation de la Recherche Clermontoise – P. Henrard (VP Recherche UCA) – Amphi Limagne CRBC
  • 14.15 – 14.30 : Présentation d’UCA PARTNER – E. Tomasella (Directeur UCA PARTNER)
  • 14.30 – 15.30 : L’architecture cellulaire en microscopie électronique – J. Bohatier (LMGE, Clermont-Frd)
  • 15.30 – 15.45 : La TEM tomo : de la 2D à la 3D – C. Cazevieille (INM COMET, Montpellier)
  • 15.45 – 16.15 : Apport de la microscopie électronique pour l’étude du muscle squelettique et de ses pathologies –
  • J. Authier (UPEC, Créteil)
  • 16.15 – 16.45 : Pause
    16.45 – 17.10 : Les relations entre l’astrocyte et le neurone : une exploration morphologique en 3D – K. Pernet Gallay (Institut des Neurosciences, Grenoble)
  • 17.10 – 17.50 : Histophysiologie et physiopathologie digestive : Contributions fondamentales de la microscopie électronique – J. Tran Van Nhieu ((UPEC, Créteil)
  • 17.50 – 18.10 : “Escherichia coli : un acteur central du développement de l’inflammation intestinale et du cancer colorectal” – J. Denizot (M2iSH, Clermont-Frd)
  • 18.15 – 20.00 : Sessions Posters, concours photos, stand exposants
  • 20.00 : Buffet sur place

Jeudi 7 juin
  • 8.30 : Départ en bus à l’entrée de la Faculté de Médecine  -> Vulcania
  • 9.15 – 9.30 : Accueil par le Directeur Scientifique de Vulcania
  • 9.30 – 10.00 : Intérêt de la microscopie électronique en néphropathologie non tumorale – E. Blanchard (CHU, Tours)
  • 10.00 – 10.30 : Pathologie infectieuse en MET – G. Jouvion (Institut Pasteur, Paris)
  • 10.30 – 11.00 : Pause
    11.00 – 12.00 : Nouveautés technologiques présentées par 4 sociétés
  • 12.00 – 12.30 : Volcans d’Auvergne, 25 millions d’années d’activité – N. Cluzel (LMV, Clermont-Frd)
  • 12.30 – 14.00 : Buffet sur place
    14.00 – 14.15 : Le service Formation France BioImaging – Caroline Thiriet (CEMIBIO CNRS-Institut Curie, Paris)
  • 14.15 – 15.15 : Assemblée Générale du RCCM – Nathalie Mesmer-Dudons et Bruno Payré
  • 15.15 – 16.15 : Session groupes de travail du RCCM (bilan et perspectives) – Coralie Spiegelhalter et Sophie Le Panse
  • 16.15 – 19.15 : Visite du parc
  • 19.15 – 20.15 : Apéritif – photo de groupe
  • 20.15 – 23.00 : Dîner
  • 23.00 : Retour sur Clermont en bus

Vendredi 8 juin
  • 9h00 – 10.30 : Ateliers (2 ateliers de 40 min au choix) :
    • Artefacts en MEB  – A. Kosta, T. Meylheuc et  A. Canette
    • Artefacts en MET –  C. Cazevieille et S. Balor
    • Interprétation de structures  –  J. Bohatier et A. Schmitt
    • Particularités animales en MET – G. Jouvion et S. Le Panse
  • 10.30 – 11.00 : Pause
  • 11.00 – 11.30 : Apports de l’observation ultrastructurale à l’analyse fonctionnelle du végétal – E. Béré (ImageUP, Poitiers)
  • 11.30 – 12.00 : Caractérisation morphologique d’organoïdes murins intestinaux déficients pour la protéine MUNC18-2 en microscopie électronique en transmission – O. Nicolle (Institut de Génétique et Développement, Rennes)
  • 12.00 : Remise des prix pour concours poster et concours photos – Fin du séjour auvergnat

Oct
15
lun
La microscopie de fluorescence : bases et nouveautés
Oct 15 – Oct 19 Jour entier

 Objectifs

  • Acquérir des bases théoriques et pratiques sur la microscopie de fluorescence
  • Connaître les avantages et les limites des divers systèmes d’acquisition d’image en microscopie
  • S’initier aux nouveaux développements en microscopie de fluorescence

Public

Chercheurs, ingénieurs, techniciens désireux de s’initier aux techniques d’imagerie en fluorescence

bandeauformation

Pré-requis

Aucun, si ce n’est un intérêt clairement affiché pour l’imagerie optique du vivant

Programme

Cours théoriques (14 h) :

Le cours insistera sur les notions de base requises pour acquérir des images dans les meilleures conditions possibles, en fonction de chacune des méthodes utilisées, sur la diversité des échantillons susceptibles d’être imagés, sur les précautions à prendre pour éviter les erreurs d’interprétation. – Le microscope en fond clair et à fluorescence, principe, description, réglages importants, acquisition d’images sur système champ large, les caméras CCD et C-MOS

  • Les sondes et les protéines fluorescentes
  • Analyse de l’interaction des protéines par FRET (Fluorescence Resonance Energy Transfer)
  • La microscopie confocale mono et multiphotonique : principes et applications
  • La déconvolution des images
  • Imagerie 3D en microscopie à feuille de lumière
  • Les techniques de super-résolution
  • La préparation des échantillons
  • L’imagerie intra-vitale et l’imagerie du petit animal
Travaux pratiques (18 h, en sous-groupe de 4 stagiaires max.) :

Travaux pratiques en petits groupes sur différents appareillages de la plateforme d’imagerie toulousaine (microscopes champ large, confocaux, multiphotons, SPIM…)

  • Avantages et limites des différents systèmes
  • Acquisition et analyse des images dans les meilleures conditions

Note : Possibilité de faire les TP, à des fins pédagogiques, sur des échantillons apportés par les stagiaires

Equipements (plateformes CPTP & IPBS)

Microscopes champ large, microscopes confocaux, microscope multiphotons, caméras CCD, microscope et macroscope à feuille de lumière (SPIM), microscope intravital, système d’acquisition de fluorescence corps entier

Intervenants

Chercheurs et ingénieurs des instituts de recherche suivants :

  • Fédération de recherche en biologie de Toulouse (FR 3451)
  • Fédération de recherche agrobiosciences, interactions et biodiversité (FR 3450)
  • Institut des technologies avancées en sciences du vivant (ITAV – Centre Pierre Potier)
  • Fédération de recherche biomédicale de Toulouse (SFR BMT)


 

CNRSformentrep

Une formation proposée avec :


Quelques commentaires des stagiaires :

Cette formation va me permettre d’optimiser mes manips et mes acquisitions d’images en champ large. J’espère par le futur pouvoir mettre à profit les compétences nouvellement acquises en confocal et pourquoi pas en FRET.”

Aurore F., agence nationale”

Très bien, bon contenu et bonne organisation.

Olivier T., industrie pharmaceutique

Très bonne formation, avec des intervenants passionnés et passionnants.“,

Laurent C., établissement de recherche

Nov
12
lun
Microscopie biphotonique dynamique intravitale et endoscopie
Nov 12 – Nov 14 Jour entier

 Objectifs

  • Assimiler les bases théoriques de la microscopie multiphotonique
  • Connaître les atouts et les faiblesses de l’endomicroscopie
  • Savoir utiliser les outils nécessaires à l’élaboration d’expérimentations dans le domaine de l’imagerie multiphotonique intravitale et sur explant tissulaire : préparation d’échantillons vivants, acquisition et visualisation des images
  • Savoir acquérir des images in vivo sur un animal entier ou sur explant tissulaire

Public

Chercheurs, ingénieurs, techniciens

bandeauformation

Pré-requis

Avoir de solides bases en microscopie de fluorescence. Avoir par exemple suivi un des stages “La microscopie de fluorescence : bases et nouveautés” (Réf. 18126, catalogue CNRS) ou “Atelier de microscopie confocale” (Réf. 18129, catalogue CNRS) ou niveau équivalent.

Programme

Cours théoriques (40%) :
  • Bases théoriques de la microscopie biphotonique
  • Endoscopie linéaire
  • Sondes pour la microscopie biphotonique
  • Microscopie biphotonique ex-vivo : élaboration d’expériences sur tissu explanté
  • Microscopie biphotonique intravitale : élaboration d’expériences sur animal anesthésié
Travaux pratiques (60%) :

TP en sous-groupes de 4 stagiaires avec un intervenant par sous-groupe.

  • Coupe de tissu frais, explantation, puis imagerie multicouleur SHG en biphoton
  • Imagerie intravitale chez la souris en biphoton
  • Endoscopie linéaire : imagerie intravitale chez la souris
  • Visualisation et analyse des images acquises avec le logiciel Imaris (Bitplane)
  • Table ronde et retour d’expérience : échanges sur les problématiques des stagiaires

Note : Possibilité de faire les TP, à des fins pédagogiques, sur des échantillons apportés par les stagiaires

Equipements (plateformes CPTP & IPBS)

2 microscopes Zeiss 7 MP ; endoscope MonaKea Technologie

Intervenants

  • S. Allart, E. Bellard, M. Rodrigues (ingénieures) et S. Boullier (maître de conférences)


 

CNRSformentrep

Une formation proposée avec :


Quelques commentaires des stagiaires :

“Les différents setups et astuces seront très utiles ! “

Thibault N., établissement de recherche

“Accueil très agréable.”

Céline M.établissement de recherche

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